OBIETTIVI FORMATIVI:

Lo studente deve conoscere le strumentazione di laboratorio utilizzate in chimica clinica, in anatomia patologica e in microbiologia clinica finalizzando la conoscenza all'applicazione nelle tecniche diagnostiche.

PREREQUISITI:

Gli studenti devono possedere conoscenze di base di chimica, biochimica, fisica e tecniche di culture cellulari

PROGRAMMA:

• Generalità sulla Medicina di Laboratorio

• Preparazione e conservazione dei campioni biologici

• Variabilità delle misure e variabilità biologica; variabilità pre-analitica ed analitica

• Prelievo e conservazione di campioni ematici/urine

•Tecniche Separative basate su centrifugazione (analitica e separativa):

          Centrifugazione differenziale

          Centrifugazione su gradiente di densità

          Centrifugazione zonale

          Centrifugazione isopcnica

          Separazione delle componenti del sangue

          Purificazione del Buffy Coat su Ficoll

          Separazione di popolazioni cellulari con biglie immunomagnetiche

• Tecniche Separative Elettroforetiche (E. orizzontale e verticale)

          SDS-PAGE

          ElettroBlot

          Western Blot

          E. su acetato di Cellulosa

          Isoelettrofocusing

• Tecniche Separative Cromatografiche

          C. su strato sottile

          C. a scambio ionico

          C. per gel filtrazione

          C. di affinità

          HPLC

• Tecniche Spettroscopiche

          Generalità

          Assorbanza e Trasmittanza -Legge di Lambert Beer

          Spettrofotometro 

          Metodiche end-point enzimatiche e non

          Turbidimetria e Nefelometria (legge di Rayleigh)

          Fluorimetria

          Densitometria

• Enzimologia Clinica

• Tecniche Immunochimiche

          Generalità

          Agglutinazione diretta ed indiretta

          Immunoprecipitazione ed Immunodiffusione

          Immunoelettroforesi

          RadioImmuno Assay (RIA)

          Enzyme-Linked Immuno-Sorbent Assay (ELISA)

• Automazione in diagnostica